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EXPERTO EN BIOLOGÍA MOLECULAR Y CITOGÉNETICA

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  • Es un curso bastante completo, aunque añadiría más información que no se estudia en la asignatura de biología molecular y citogenética porque sino es solo un repaso y ya.
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Durante el desarrollo del curso conoces los fundamentos biológicos de la Citogenética y Biología Molecular; así como también las técnicas y organización de los laboratorios de Citogenética. Además aprendes las técnicas de hibridación del ADN y su aplicación en las técnicas de Citogenética Molecular; las técnicas y organización de los laboratorios de Biología Molecular, extracción de ácidos nucleicos, las herramientas de amplificación de las secuencias de interés, variantes de las técnicas de amplificación y las técnicas de visualización de los fragmentos amplificados, finalizando con las aplicaciones de las técnicas de Biología Molecular.

Actualiza tus conocimientos en el área de la Biología molecular, siempre es tiempo de mejorar y crecer en tu desarrollo como profesional. Si tienes alguna duda sobre este curso puedes dirigirte a la opción “Pedir información” en esta misma página de Emagister, para comunicarte con un asesor que te ayudará.

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Conoce los fundamentos biológicos de la Citogenética y Biología Molecular; las técnicas y organización de los laboratorios de Citogenética. Aprende las técnicas de hibridación del ADN y su aplicación en las técnicas de Citogenética Molecular; las técnicas y organización de los laboratorios de Biología Molecular, extracción de ácidos nucleicos, las herramientas de amplificación de las secuencias de interés, variantes de las técnicas de amplificación y las técnicas de visualización de los fragmentos amplificados, finalizando con las aplicaciones de las técnicas de Biología Molecular.

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Como puede ser curso de ferralla?

Abdoulaye G., 26/12/2022

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Hola, me gustaría saber si al realizar este curso Dan un título, gracias!

Cristina M., Más de dos años

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  • Es un curso bastante completo, aunque añadiría más información que no se estudia en la asignatura de biología molecular y citogenética porque sino es solo un repaso y ya.
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Valoración del Centro

Elena Fornas García

5.0
22/08/2022
Sobre el curso: Es un curso bastante completo, aunque añadiría más información que no se estudia en la asignatura de biología molecular y citogenética porque sino es solo un repaso y ya.
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Materias

  • Biología molecular
    1

    1 alumnos han indicado haber adquirido esta competencia

  • Ácidos nucleicos
    1

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  • Propiedades físicas
  • Célula eucariota
  • Célula procariota
  • El ADN
    1

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  • Replicación de ADN
    1

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  • Duplicación de ADN
    1

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  • La citogénica
    1

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  • Cromosomas sexuales
    1

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Temario

FUNDAMENTOS BIOLÓGICOS DE LA BIOLOGÍA MOLECULAR

  • 1.1. Introducción: las células procariota y eucariota
  • 1.2. Ácidos nucleicos ..
  • 1.3. ADN
  • 1.4. ARN
  • 1.4.1. Tipos de ARN
  • 1.5. Propiedades físicas del ADN relacionadas con las técnicas
  • de biología molecular
  • 1.6. Características funcionales del ADN
  • 1.6.1. Replicación o duplicación del ADN
  • 1.6.2. Transcripción
  • 1.6.3. Traducción
  • 1.7. La información genética. La estructura de los genes
  • 1.8. Organización del genoma humano
  • 1.9. Regulación de la expresión génica
  • 1.10. Enzimas asociadas a los ácidos nucleicos
  • 1.11. Mutaciones y polimorfismos
  • 1.11.1. Mutaciones
  • 1.11.2. Polimorfismos
  • 1.12. ADN plasmídico
  • Ejercicios
  • Test de autoevaluación

2. FUNDAMENTOS BIOLÓGICOS DE LA CITOGENÉTICA .

  • 2.1. Cromosomas: organización cromosómica y estructura
  • 2.1.1. Número de cromosomas
  • 2.1.2. Leyes que cumplen los cromosomas
  • 2.1.3. Proteínas cromosómicas
  • 2.1.4. Estados de condensación de los cromosomas
  • 2.1.5. Componentes de los cromosomas
  • 2.1.6. Tipos de cromosomas humanos
  • 2.1.7. Autosomas y cromosomas sexuales .
  • 2.1.8. Diferencia entre los cromosomas X e Y de mamíferos
  • 2.1.9. Heterocromatina y eucromatina
  • 2.2. Ciclo celular .
  • 2.2.1. Interfase ..
  • 2.2.2. Fase de división celular o fase M
  • 2.3. Nomenclatura básica en genética
  • Test de autoevaluación
  • Parte II
  • TÉCNICAS CITOGENÉTICAS

3. ORGANIZACIÓN DEL LABORATORIO DE CITOGENÉTICA

  • 3.1. Introducción
  • 3.2. Organigrama
  • 3.3. Personal
  • 3.4. Personal técnico
  • 3.4.1. Funciones del personal técnico
  • 3.4.2. Formación del personal técnico
  • 3.5. Procedimientos de laboratorio
  • 3.6. Instalaciones
  • 3.6.1. Área técnica
  • 3.6.2. Área de estudio de los cromosomas
  • 3.7. Equipos del laboratorio de citogenética
  • 3.7.1. Equipamiento mínimo
  • 3.7.2. Equipamiento opcional
  • 3.8. Materiales y reactivos
  • 3.9. Medios y aditivos
  • 3.9.1. Sistemas tampón
  • 3.9.2. Sueros y sustitutos
  • 3.9.3. Agentes mitógenos
  • 3.10. Esterilidad en el laboratorio de citogenética
  • 3.10.1. Procedimientos que pueden originar la contaminación de los cultivos
  • 3.10.2. Manipulación de muestras en condiciones de esterilidad
  • 3.10.3. Esterilización
  • 3.10.4. Antibióticos y fungicidas
  • 3.10.5. Fuentes de contaminación
  • 3.10.6. Procedimientos en caso de contaminación
  • 3.11. Seguridad en los laboratorios de citogenética
  • 3.11.1. Protocolos de actuación en caso de accidente
  • 3.12. Gestión de residuos
  • 3.12.1. Gestión de residuos químicos
  • 3.12.2. Gestión de residuos biosanitarios
  • Ejercicios propuestos
  • Test de autoevaluación.

4. TÉCNICAS DE OBTENCIÓN DE CROMOSOMAS

  • 4.1. Introducción
  • 4.2. Técnicas de obtención y mantenimiento de los cultivos
  • 4.2.1. Tipos de cultivos celulares
  • 4.2.2. Determinación del número y viabilidad celular
  • 4.2.3. Muestras para análisis cromosómico
  • 4.3. Cultivo de linfocitos de sangre periférica para estudios
  • citogenéticos constitucionales
  • 4.3.1. Condiciones preanalíticas de las muestras
  • 4.3.2. Siembra de la muestra
  • 4.3.3. Técnicas de cultivos y obtención de los cromosomas
  • 4.3.4. Técnicas de obtención de las extensiones.
  • 4.3.5. Tinción con Giemsa
  • 4.4. Técnicas de bandeo cromosómico
  • 4.4.1. Bandas GTG
  • 4.4.2. Bandas CBG
  • 4.4.3. Bandas NOR
  • 4.5. Cultivo de linfocitos sincronizados. Cariotipo de alta resolución
  • 4.6. Cultivo celular en diagnóstico prenatal
  • 4.6.1. Cultivo celular de fibroblastos de líquido amniótico
  • 4.6.2. Cultivo de vellosidades coriales
  • 4.6.3. Cultivo celular de sangre procedente del cordón umbilical fetal
  • Ejercicios propuestos.
  • Test de autoevaluación.

5. ANÁLISIS CROMOSÓMICO. CARIOTIPO HUMANO

  • 5.1. Introducción
  • 5.2. Clasificación de los cromosomas
  • 5.3. Constitución cromosómica
  • 5.4. Identificación de los cromosomas bandeados
  • 5.4.1. Idiograma
  • 5.4.2. Nivel de resolución de los cromosomas C y NOR
  • 5.5. Cromatina sexual
  • 5.6. Métodos de análisis cromosómico
  • 5.6.1. Análisis directo al microscopio
  • 5.6.2. Equipos cariotipadores
  • 5.6.3. Localización de las metafases apropiadas para análisis
  • 5.6.4. Buscador automático de metafases
  • 5.6.5. Análisis cromosómico
  • 5.6.6. Artefactos y alteraciones cromosómicas originadas por el cultivo
  • 5.7. Cariotipo: definición y uso
  • 5.8. Estudios de alta resolución
  • 5.9. Nomenclatura citogenética
  • 5.9.1. Fórmula cromosómica
  • 5.10. Indicaciones para estudio de cariotipos
  • 5.11. Polimorfismos cromosómicos que afectan a las regiones heterocromáticas ….
  • Ejercicios propuestos
  • Test de autoevaluación

6. ANOMALÍAS CROMOSÓMICAS.
APLICACIONES DIAGNÓSTICAS DE LAS TÉCNICAS CITOGENÉTICAS

  • 6.1. Introducción
  • 6.2. Clasificación de las anomalías cromosómicas
  • 6.3. Anomalías numéricas
  • 6.3.1. Euploidías
  • 6.3.2. Tetraploidía
  • 6.3.3. Aneuploidías
  • 6.4. Anomalías estructurales
  • 6.4.1. Translocaciones
  • 6.4.2. Inserciones
  • 6.4.3. Inversiones
  • 6.4.4. Deleciones
  • 6.4.5. Duplicaciones
  • 6.4.6. Cromosomas en anillo
  • 6.4.7. Isocromosomas
  • 6.4.8. Cromosomas marcadores y microcromosomas
  • 6.5. Mosaicismos y quimeras
  • 6.6. Anomalías de los cromosomas sexuales
  • 6.6.1. Anomalías numéricas de los cromosomas sexuales
  • 6.6.2. Síndrome de Turner 45,X0. Disgenesia ovárica
  • 6.6.3. Síndrome del triple-X
  • 6.6.4. Mujeres 48,XXXX y mujeres 49,XXXXX
  • 6.6.5. Síndrome de Klinefelter
  • 6.6.6. Síndrome de Fracaro 49,XXXXY
  • 6.6.7. Síndrome 47,XYY
  • 6.6.8. Anomalías estructurales de los cromosomas sexuales
  • 6.7. Nomenclatura cromosómica de las alteraciones cromosómicas
  • 6.8. Aplicaciones diagnósticas de las técnicas citogenéticas
  • Ejercicios propuestos
  • Test de autoevaluación.
  • Parte II
  • TÉCNICAS DE HIBRIDACIÓN DEL ADN Y DE LA CITOGENÉTICA MOLECULAR

7. TÉCNICAS DE HIBRIDACIÓN DE LOS ÁCIDOS NUCLEICOS

  • 7.1. Introducción
  • 7.2. Técnica de hibridación de los ácidos nucleicos
  • 7.2.1. Sondas
  • 7.2.2. Métodos de marcaje de las sondas
  • 7.2.3. Procedimiento de hibridación
  • 7.3. Hibridación in situ
  • 7.4. Hibridación fluorescente in situ (FISH).
  • 7.4.1. Tipos de sondas utilizadas en FISH convencional
  • 7.4.2. Técnicas derivadas de la FISH convencional
  • 7.4.3. Protocolo de la técnica de FISH
  • 7.4.4. Aplicaciones, ventajas y limitaciones de las técnicas de FISH
  • 7.5. Técnicas de hibridación y transferencia de ácidos nucleicos
  • en soporte sólido .
  • 7.5.1. Hibridación genómica comparada
  • 7.5.2. Array-CGH
  • 7.5.3. Southern blot
  • 7.5.4. Northern blot
  • 7.5.5. Técnicas de dot blot, sus variantes y la técnica de captura de híbrido
  • 7.6. FICTION
  • Ejercicios propuestos.
  • Supuestos
  • Test de autoevaluación.
  • Parte IV
  • TÉCNICAS DE BIOLOGÍA MOLECULAR

8. ORGANIZACIÓN DE LOS LABORATORIOS DE BIOLOGÍA MOLECULAR

  • 8.1. Introduc
  • ción
  • 8.2. Organización y funciones del laboratorio de biología molecular .
  • 8.2.1. Personal
  • 8.2.2. Procesos que se realizan y personal encargado
  • 8.3. Equipamiento
  • 8.4. Materiales y reactivos
  • 8.5. Áreas de trabajo, tareas y equipos
  • 8.5.1. Área de preamplificación pre-PCR
  • 8.5.2. Área de amplificación. Termocicladores convencionales y de gradiente, y
  • para PCR cuantitativa a tiempo real
  • 8.5.3. Área de post-amplificación o análisis
  • 8.5.4. Área neutra
  • 8.6. Normas de trabajo en el laboratorio de biología molecular
  • 8.6.1. Normas específicas del laboratorio de biología molecular
  • 8.6.2. Normas en la utilización de los equipos
  • 8.7. Fuentes de contaminación
  • 8.8. Seguridad
  • 8.8.1. Riesgo debido a la exposición a agentes físicos
  • 8.8.2. Riesgo debido a la exposición a agentes químicos
  • 8.8.3. Riesgo debido a la exposición a agentes biológicos
  • 8.8.4. Normas de seguridad generales referidas a la forma de trabajo
  • 8.8.5. Señalización de los riesgos
  • 8.9. Gestión de residuos
  • 8.10. Calidad y uso eficiente de los recursos
  • 8.10.1. Equipos y utensilios
  • 8.10.2. Materiales y productos
  • 8.10.3. Productos químicos de desinfección y limpieza
  • 8.10.4. Agua
  • 8.10.5. Papel
  • 8.10.6. Energía
  • Ejercicios propuestos.
  • autoevaluación

9. TÉCNICAS DE EXTRACCIÓN DE ÁCIDOS NUCLEICOS. PCR Y ELECTROFORESIS

  • 9.1. Introducción .
  • 9.2. Técnicas de extracción de ADN/ARN en sangre periférica, biopsias y tejidos
  • 9.2.1. Muestras
  • 9.2.2. Fundamento de las técnicas de extracción .
  • 9.2.3. Técnicas manuales de extracción del ADN
  • 9.2.4. Kits de extracción del ADN
  • 9.2.5. Sistemas automáticos de extracción de ácidos nucleicos
  • 9.2.6. Técnicas de extracción de ARN
  • 9.3. Cuantificación y calidad del ADN/ARN extraído .
  • 9.4. PCR
  • 9.4.1. Componentes para la realización de la PCR
  • 9.4.2. Etapas de la PCR
  • 9.4.3. Purificación del producto de PCR
  • 9.4.4. Problemas que se pueden presentar en la PCR
  • 9.5. Técnicas variantes de la PCR
  • 9.5.1. Nested PCR o PCR anidada
  • 9.5.2. Multiplex PCR
  • 9.5.3. PCR a tiempo real o PCR cuantitativa
  • 9.5.4. Técnica del MLPA
  • 9.5.5. Técnica de PCR con transcripción inversa (RT-PCR)
  • 9.6. Electroforesis de ADN
  • 9.6.1. Electroforesis capilar
  • Ejercicios propuestos
  • Test de autoevaluación.

10. MÉTODOS DE CLONACIÓN Y SECUENCIACIÓN DEL ADN

  • 10.1. Introducción
  • 10.2. Clonación del ADN
  • 10.2.1. Tipos de clonación y fases del procedimiento de clonación
  • 10.3. Secuenciación de ADN
  • 10.3.1. Método de secuenciación de Maxam y Gilbert
  • 10.3.2. Método de secuenciación de Sanger y Coulson
  • 10.3.3. Secuenciación automática de primera generación
  • 10.3.4. Otros análisis realizados con el secuenciador: análisis de fragmentos
  • 10.4. Secuenciación de última generación o secuenciación masiva o NGS
  • 10.4.1. Sistemas de clonación del ADN para secuenciación
  • 10.4.2. Reacciones de secuenciación
  • 10.5. Secuenciación de 3.ª generación
  • 10.5.1. Secuenciación Ion Torrent
  • 10.5.2. Secuenciación por nanoporos ..
  • 10.5.3. Análisis de los datos obtenidos por secuenciación masiva .
  • 10.6. Secuenciación de ARN
  • 10.7. Bioinformática: análisis de bases de datos de ADN y proteínas
  • 10.7.1. Bases de datos
  • Ejercicios propuestos
  • Test.autoevaluación

11. APLICACIÓN CLÍNICA DE LAS TÉCNICAS DE BIOLOGÍA MOLECULAR .

  • 11.1. Aplicaciones de los estudios genéticos en el diagnóstico clínico
  • 11.2. Aplicación de los estudios genéticos
  • 11.2.1. Consideraciones en los estudios genéticos
  • 11.3. Aplicaciones en el diagnóstico posnatal
  • 11.3.1. Aplicaciones en neonatología y pediatría
  • 11.3.2. Aplicaciones en endocrinología
  • 11.3.3. Aplicaciones en el diagnóstico de enfermedades neurodegenerativas
  • 11.3.4. Aplicaciones en el diagnóstico de enfermedades cardiovasculares
  • 11.3.5. Aplicaciones en el diagnóstico de enfermedades metabólicas
  • 11.3.6. Aplicaciones en el diagnóstico de infertilidad
  • 11.4. Aplicaciones en el diagnóstico prenatal
  • 11.4.1. Diagnóstico prenatal invasivo
  • 11.4.2. Diagnóstico prenatal no invasivo
  • 11.4.3. Aplicaciones en el diagnóstico preimplantacional
  • 11.5. Aplicaciones en el diagnóstico molecular microbiológico
  • 11.6. Aplicaciones en medicina legal y forense
  • 11.7. Aplicaciones en farmacogenómica
  • 11.8. Genética y cáncer
  • 11.8.1. Mecanismos de transformación de células normales en células tumorales
  • 11.8.2. Tipos de cáncer
  • 11.8.3. Oncohematología
  • Ejercicios propuestos
  • Test de autoevaluación…..
  • Anexo 7.1. Hibridación in situ cromogénica (CISH)
  • Anexo 9.1. Pretratamiento de diferentes muestras biológicas previo a la extracción
  • de los ácidos nucleicos
  • Anexo 9.2. Métodos de detección de la hibridación de la fluorescencia en la técnica
  • de PCR a tiempo real
  • Anexo 10.1. Plataformas de secuenciación: Illumina y SOLID

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